深静脉置管接口处漏液怎么办

一、深静脉置管接口处漏液怎么办

是静脉输液的深静脉吗？要看别人有没有胸疼，呼吸困难，如果有肯定要先跟置管医生联系，拍片确认是否置管位置有移动或者不当。如果没有胸疼呼吸困难，即可进行换药，再观察

二、深静脉置管对身体有害嘛？会不会有什么并发症？

1、静脉炎 是最常见的并发症。置管早期出现的静脉炎通畅与穿刺过程中管壁受到机械刺激即机械性损伤有关，为物理性静脉炎；后期出现的静脉炎与化学刺激或病人的特殊体质有关，为化学性静脉炎。治疗方面可行暖湿敷或33％硫酸镁湿敷，必要时可给予激素治疗。若处理后24-48小时不缓解或加重，应立即拔管。预防方面，应建立最大的生理屏障，严格无菌操作，减少机械性刺激，选择合适导管，还应加强置管后的护理。

2、静脉血栓形成 静脉血栓形成可发生在浅静脉或（和）深静脉，多与导管尖端位置不正确，输入高渗液，或血管壁受损及血液处于高凝状态有关。治疗方面应拔除导管，在另一位置重新置管，输入肝素，热敷受影响的区域。在预防上应注意纠正导管的位置，同时低剂量华法林治疗，熟练掌握创伤较小的穿刺与置管的技术。

3、感染 导管相关感染的类型有三种：局部感染、隧道感染和导管相关的血流感染。感染的治疗主要是采取局部措施，理疗，热敷，加强局部护理，换药等，必要时口服抗生素，根据情况看是否需要拔管。预防方面：1重视无菌环境，严格无菌操作；2选择合适的消毒剂及皮肤消毒方法；3采用合适的敷料覆盖导管部位，随时保持敷料的清洁、干燥及密封；4注意观察置管处皮肤的情况，如出现疼痛，发红、肿胀，应立即给予处理。

4、导管阻塞 可分为血栓性和非血栓性阻塞，前者由于血液反流，在管腔内形成血凝块或血栓所致，后者的愿意较多，如导管扭曲、打折 、药物结晶沉积，输入高浓度液体及异物颗粒阻塞等。导管阻塞时应检查外部因素及病人体位，发现阻塞解决之即可。预防在于：正确合理利用导管；尽量应用输液泵输注；正确冲管封管等。

5、导管异位 主要与血管变异、患者体位改变等有关。处理：如导管异位距离短，可自行复位，若距离较长，可退出少许后再复位。

6、导管拔除困难 相关因素：导管置入时间过长和静脉壁粘粘附；情绪变化，如害怕紧张导致的血管痉挛；静脉炎、血栓形成、感染等。处理时不要强行拔管，可热敷置管处，还可向导管内注射温热盐水。

深静脉置管对于人体是异物，但我国医学还是值得信任的。你问会不会对血管造成伤害，毕竟是异物进入，这主要还是看医生的临床经验和手法技术。对于会不会有炎症主要主要好消毒避免感染的情况。

还好，一般不会，医院抗炎效果还好。即使有静脉炎发生，也好治疗啊。

其实在这也不好说会不会有并以症啥的,都是在无菌的操作情况下进行的,按理说应该不会出现太大的问题的,医生会早做防范的,有些事担心的太早反而对身体不利,

主要就是预防感染，对血管没有任何影响更不会形成静脉炎的

三、如何正确采集血培养标本

如何正确采集血培养标本

采集血培养标本是有指征的，当患者体温超过38℃或低于36℃，患者寒战，查血常规白细胞计数大于10×109 /L,特别有“核左移”未成熟或杆状核白细胞时，粒细胞减少、成熟的多核白细胞<1×109 /L，血小板减少，患者出现皮肤黏膜出血、昏迷、休克或多器官衰竭，C反应蛋白升高，降钙素原升高等情况均应采集血培养标本。下面是我为大家带来的如何正确采集血培养标本的知识，欢迎阅读。

什么情况下应该采集血培养?

采集血培养标本是有指征的，当患者体温超过38℃或低于36℃，患者寒战，查血常规白细胞计数大于10×109 /L,特别有“核左移”未成熟或杆状核白细胞时，粒细胞减少、成熟的多核白细胞<1×109 /L，血小板减少，患者出现皮肤黏膜出血、昏迷、休克或多器官衰竭，C反应蛋白升高，降钙素原升高等情况均应采集血培养标本。当然不能除外感染，需明确病原菌时，也要采集血培养。

采集血培养标本有最佳时间吗?

血培养标本是有最佳采集时间的，尽可能在患者寒战开始时、高热高峰前30-60分钟内采血，另外在患者接受抗生素治疗前采血，但如果患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前取血。

为什么使用需氧和厌氧瓶并采集两套呢?

需氧瓶、厌氧瓶标本同时取有助于提高阳性率，细菌包括需氧菌、厌氧菌和兼性厌氧菌。兼性厌氧菌不论在有氧或无氧环境中都能生长，但以无氧时生长较好，大多数病原菌属于此类。因此，建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶，有利于微需氧菌和厌氧菌的检出，但如果不能满足推荐的'采血量时，应首先满足需氧瓶。成人患者一套血培养标本需取血20ml,需氧瓶、厌氧瓶各10ml，一套标本的检测灵敏度是73.2%，两套标本的检测灵敏度是93.9%，可见采集两套标本可以明显提高检测灵敏度，所以取两套标本还是很有必要的。值得注意的是，如果取两套标本要分别在两个穿刺点采血。

怎样规范的采集血培养标本呢?

第一步：手卫生。用皂液和流动水或含酒精的快速手消毒剂进行手卫生。

第二步：消毒瓶塞。用酒精纱布消毒培养瓶塞，充分待干。

第三步：皮肤消毒。范围直径不小于5厘米，消毒后不可再用手接触。

① 先用70%-80%乙醇消毒不少于30秒。

②再用1%-2%碘酊消毒30秒或10%碘伏消毒60秒。

③ 再用70%-80%乙醇脱碘。

注意：对碘过敏的患者用70%-80%乙醇消毒2遍作用时间各3分钟，等酒精挥发干燥后采血。

第四步：采血。取血后不要更换针头直接注入血培养瓶。如果血量充足：先注厌氧瓶，后注需氧瓶，如果血量不足：优先注入需氧瓶，剩余注入厌氧瓶，因为真菌、绿脓杆菌、窄食单胞菌多长在需氧瓶内。

第五步：混匀。血培养标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液凝固，不要大力摇晃。在每个培养瓶上分别标记采血部位和采血时间，注明是导管血还是外周血。

第六步：同法选择对侧穿刺部位采集第二套标本。

第七部：送检。血培养标本尽快送到实验室，任何的时间延误都会延迟或阻止检测细菌的生长。

注意：标本应从静脉取血，不宜从静脉导管或静脉留置口取血。若导管设施取血，不要弃去初段血，不用抗凝剂冲洗，必须同时静脉取血，以求对比和解释。不推荐使用真空采血针(蝴蝶针)将静脉血直接入瓶。不主张换针头入瓶。有血的培养瓶不可放入冰箱和冻箱保存。

未使用的血培养瓶在室温保存，被接种后不得冷藏或冷冻。

采集血培养标本需要严格无菌操作，但采集、送检、接种过程等仍然有可能有不可避免的污染，会不会有一些污染菌呢?

在多次血培养中单次培养下列细菌阳性，可认为是污染菌，包括凝固酶阴性葡萄球菌、棒状杆菌、微球菌、丙酸杆菌、芽孢杆菌。如多次血培养多次阳性，可能为条件致病菌，需要结合临床进行分析。

对于成人及青少年患者采集血培养标本的总体建议：

1. 血流感染、脑膜炎、骨髓炎、关节炎、肺炎患者，在治疗前于不同部位采血2套或3套，同一部位需间隔30min-1小时，每套20ml,需氧、厌氧各10ml。

2. 急性感染性心内膜炎患者，治疗前30分钟内采血3套。

3. 亚急性感染性心内膜炎患者，治疗前第一天采血2-3套，间隔30-60分钟，如结果为阴性，第二天和第三天再抽取血培养，24小时内采血不超过4套。

4. 导管相关性血流感染患者，采集2套血培养，1套从怀疑存在感染的导管获得，一套从外周获得，两套血同时采集。可先取外周血，5分钟内完成对导管血的采集。拔除导管时送导管尖端培养，并采集血培养标本。

;